PLVX-Puro质粒包病毒流程
2025-10-05PLVX-Puro质粒包病毒流程
一、实验流程图解
A[Day 1:293T细胞铺板] --> B[Day 2:三质粒共转染]
B --> C[Day 3-4:病毒收集]
C --> D[靶细胞预实验]
D --> E[正式感染+嘌呤霉素筛选]
- 关键操作步骤图解
1. 质粒结构特征(PLVX-Puro核心元件)
5'LTR ──► CMV启动子 ──► MCS(目的基因)──► IRES ──► PuroR ──► WPRE ──► 3'LTR
│ │ │
启动表达 插入靶基因 抗性筛选标记
2. 三质粒共转染(Day 2关键操作)
图解步骤:
质粒混合液 沉淀形成 细胞添加
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│ PLVX-Puro │ │ CaCl₂ + 2×HBS │ │ 293T细胞 │
│ psPAX2 ├───混合──► 室温静置20min ───滴加──► 培养皿 │
│ pMD2.G │ │ 乳白色微沉淀 │ │ (70%密度) │
└───────────┘ └───────────────────┘ └───────────┘
比例4:3:1 pH严格7.05-7.10 轻柔摇匀
- 病毒收集与处理(Day 3-4)
收集上清 过滤除杂 分装储存
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│ 移液器吸取培养液 │───►│ 0.45μm PVDF滤器 │───►│ -80℃冻存管 │
│ (避开细胞层) │ │ 预冷PBS润洗 │ │ 加10% FBS │
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48h & 72h 无菌操作 避免反复冻融
4. 靶细胞感染(离心法提升效率)
细胞铺板 病毒混合液添加 离心感染 换液培养
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│ 30%密度 │───►│ 病毒上清 ├───►│ 1000g │───►│ 24h后 │
│ 6孔板 │ │ Polybrene │ │ 32℃, 90min│ │ 换完全培养基│
└─────────┘ │ (终浓度8μg/mL)│ └──────────┘ └─────────┘
稳转株筛选流程
嘌呤霉素筛选关键点
预实验 正式筛选 维持培养
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│ 浓度梯度测试 │ │ 感染后48h加药 │ │ 半浓度维持 │
│ (1-10μg/mL) ├───确定──► 每日观察死亡情况 ├───►│ (如2→1μg/mL)│
│ 72hr内100%死亡│ │ 持续3-7天 │ │ 冻存早期代次│
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四、验证实验设计
| 验证方法 | 检测目标 |预期结果 |
| Western Blot | 目的蛋白表达(Flag/HA标签) | 特定分子量条带 |
| 流式细胞术 | GFP/mCherry阳性率 | >70%感染效率 |
| qPCR | 基因组整合拷贝数 | MOI=1时≈1拷贝/细胞 |
核心注意事项
1. 生物安全
所有操作在Ⅱ级生物安全柜进行,废弃物经121℃高压灭菌30分钟
2. 细胞状态
293T细胞传代≤30次,支原体检测每月1次(*图6:支原体污染对比图*)
! 正常细胞:贴壁均匀,边缘清晰
! 污染细胞:颗粒增多,部分漂浮
3. 表达稳定性
- 连续传代后可能出现沉默,添加组蛋白去乙酰化酶抑制剂(如TSA)可缓解